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纖維素（CLL）含量試劑盒說明書
可見分光光度法
注意： 正式測定之前選擇 2-3 個預期差異大的樣本做預測定。
規(guī)格：50T/48S
正式測定前取2-3個預期差異較大的樣本做預測定
測定意義：
纖維素是由葡萄糖組成的大分子多糖，通常與半纖維素、果膠和木質素結合在一起，是植物細胞
壁的主要結構成分。纖維素是一種重要的膳食纖維，是自然界中分布最廣、含量最多的 一種多糖。
測定原理：
纖維素為β －葡萄糖殘基組成的多糖，在酸性條件下加熱能分解成β －葡萄糖。β －葡萄糖在強酸作 用下，可脫水生成β －糠醛類化合物。β －糠醛類化合物與蒽酮脫水縮合，生成糠醛衍生物。顏色的深 淺可間接定量測定纖維素含量。
需自備的儀器和用品：
可見分光光度計、水浴鍋、可調式移液器、1mL 玻璃比色皿、80％乙醇、丙酮、濃硫酸（不 允許快遞） 、研缽和蒸餾水。
試劑的組成和配制：
試劑一： 液體 50mL× 1 瓶，4℃保存。
試劑二： 粉劑×1 瓶，4℃避光保存。
試劑三： 液體 10mL× 1 支，4℃保存。
標準品： 粉劑10mg× 1支，4℃保存； 含 10mg 無水葡萄糖（干燥失重<0.2%），臨用前加入 1mL 蒸餾水溶解，配制成 10mg/mL 葡萄糖溶液備用，4℃可保存 1 周，或者用飽和苯甲酸溶液溶解， 可保存更長時間。
樣品的前處理：
1 、細胞壁的提取： 取約 0.3g 樣本（計為M1），加入 1mL 80％乙醇，室溫快速勻漿，95℃水浴 20min ，冷卻至室溫，4000g 25℃離心 10min ，棄上清。沉淀加入 1.5mL80％乙醇和丙酮各洗一遍 （渦旋振蕩 2min 左右，4000g 25℃離心 10min ，棄上清即可） ，沉淀即為粗細胞壁，加入 1mL 試 劑一（去除淀粉） 浸泡 15 小時，4000g 25℃離心 10min ，棄上清，1mL 80％乙醇洗滌兩次，棄上 清，將沉淀干燥，稱重得細胞壁物質（CWM質量計為M2）。
2 、纖維素的提?。?/span> 稱取烘干的 CWM 約 5mg（計為W），加入 0.5mL 蒸餾水充分勻漿，勻漿液轉移 至 EP 管中，用蒸餾水定容至 0.5mL ，置于冰水浴中，緩慢加入 0.75mL 濃硫酸，混勻，冰水浴中 靜置 30min 。8000g 4℃離心 10min ，取上清液，用蒸餾水稀釋 20 倍后待測。
標準溶液準備：
將10mg/mL 葡萄糖標準液進行二倍稀釋得到 0.2、0. 1、0.05、0.025、0.0125、0.00625、0.003125、 0.00156mg/mL 標準溶液備用。
測定步驟：
1 、分光光度計預熱 30min 以上，調節(jié)波長至 620nm ，蒸餾水調零。
本產品僅供科學研究使用！ 請勿用于臨床、診斷、食品、化妝品檢測等用途！
2 、調節(jié)水浴鍋至 95 度。
3 、工作液的配制： 在試劑二中加入 4mL 試劑三，充分溶解，如較難溶解，可加熱攪拌； 用 不完的試劑 4℃保存一周；
4 、加樣表（在 EP 管中反應） ：
試劑（μL） | 標準管 | 測定管 |
樣本 | 300 | |
標準品 | 300 | |
工作液 | 70 | 70 |
濃硫酸 | 630 | 630 |
混勻，置 95度水浴中 10min（蓋緊，以防止水分散失） ，冷卻至室溫后，于 620nm 處讀數(shù)。 纖維素含量計算：
1 、標準曲線繪制：
以 0.2 、0. 1 、0.05 、0.025 、0.0125 、0.00625 、0.003125 、0.00156mg/mL 葡萄糖標準溶液為橫坐
標，ΔA 為縱坐標繪制標準曲線，得到線性回歸方程 y=kx+b ，將ΔA′代入方程得到 x（mg/mL）；
2 、按細胞壁干重計算
纖維素含量(mg/mg 鮮重)=x×稀釋倍數(shù)×V 提取÷W
3 、按總樣本質量計算
纖維素含量(mg/mg 鮮重)=x×稀釋倍數(shù)×V 提取÷W×（M2÷M1）
V 提?。?/span> 提取后體積，1.25mL；W：樣品質量，mg；稀釋倍數(shù)： 20；M1：總樣本質量，g； M2：細胞壁物質CWM ，g
注意事項
1. 加熱過程中有劇烈反應，震蕩時輕搖，以免壓力過大噴出造成人生傷害。
2. 濃硫酸具有強腐蝕性，建議戴防護手套操作。
3. 如樣本OD值大于1.5 ，可在纖維素提取過程中擴大稀釋倍數(shù)，計數(shù)過程中乘以對應的稀釋倍數(shù)。
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